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ibidi活細胞共聚焦利器

更新時(shí)間:2023-08-28   點(diǎn)擊次數:734次
ibidi活細胞共聚焦利器
35mm共聚焦皿
高質(zhì)量成像



激光共聚焦顯微鏡可以觀(guān)察到細胞內已經(jīng)標記好的蛋白質(zhì)和分子,為生物學(xué)研究提供了更直觀(guān)的觀(guān)測方法。如今,激光共聚焦成像已經(jīng)是一個(gè)非常常規的實(shí)驗操作,廣泛應用于生物學(xué)各個(gè)研究領(lǐng)域中。


在細胞實(shí)驗中,如果要進(jìn)行一次激光共聚焦成像,除了要知道相關(guān)的顯微鏡參數設置和操作以外,樣品的準備也是非常重要的一個(gè)環(huán)節。



傳統方法

由于激光共聚焦實(shí)驗對觀(guān)測耗材的底部有著(zhù)比較高的要求,普通的培養皿,培養板或者培養瓶都不能直接用于激光共聚焦成像。


1.比較常用的是使用170μm左右厚度的蓋玻片作為激光共聚焦成像的細胞載體。但是使用蓋玻片,在實(shí)驗操作上是非常麻煩的,如果買(mǎi)的是國產(chǎn)的蓋玻片,首先要做的一步是將蓋玻片清洗并且烘干滅菌,才能開(kāi)始使用。


2.進(jìn)口的細胞爬片,雖然不需要清洗,但是還是需要進(jìn)行包被才能讓細胞正常貼壁生長(cháng)。通常是將處理好爬片直接放在多孔板中,然后鋪細胞,熒光染色后,再用鑷子將爬片拿出,反過(guò)來(lái)放在滴有封片劑(甘油配置)的載玻片上,再進(jìn)行成像。如圖1所示:

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圖1:使用蓋玻片和細胞爬片的做免疫熒光方法示意圖

操作流程:

1.蓋玻片需用濃硫酸浸泡過(guò)夜,第二天用自來(lái)水沖洗20遍,置于無(wú)水乙醇中6小時(shí),后用三蒸水沖洗3遍,再放在飯盒或玻璃培養皿中烘干,消毒,再烘干后放入超凈臺備用。

2.準備好的蓋玻片或者專(zhuān)業(yè)的細胞爬片需要根據細胞的貼壁情況使用多聚賴(lài)氨酸等蛋白包被。

3.培養板中放置爬片非常有技巧,要將爬片與培養板底部緊密貼合,這樣才能避免長(cháng)成雙層細胞。

4.常規免疫熒光操作后,取出爬片。準備載玻片一張,在中間滴加適量的封片劑(甘油配置),將蓋玻片或爬片翻過(guò)來(lái),蓋在封片劑上,再用指甲油封片進(jìn)行成像。

5.在激光共聚焦成像之前,盡量用熒光顯微鏡檢查一下細胞狀態(tài)和成像效果,再去做激光共聚焦,畢竟做一次激光共聚焦的成像也不便宜的。



ibidi無(wú)需爬片的簡(jiǎn)便方法

這里要介紹ibidi的簡(jiǎn)便方法,大大簡(jiǎn)化了樣品準備流程,需要用到專(zhuān)為共聚焦實(shí)驗設計的共聚焦培養皿,這里以德國ibidi的共聚焦培養皿為例(ibidi 81156,ibiTreat底部處理)進(jìn)行說(shuō)明。共聚焦培養皿的底部是polymer聚合物材質(zhì),具有親水表面,讓大多數種類(lèi)的細胞都可以直接貼壁,無(wú)需另外進(jìn)行包被;同時(shí),它們的底部符合蓋玻片標準——厚度僅為180μm,在折射率,阿貝系數上,它們的性能和標準爬片一致,再加上極低的自發(fā)熒光和細胞可以直接貼壁的特性,使它們成為共聚焦成像的專(zhuān)用培養皿。


所有的操作都在培養皿中進(jìn)行,不再需要鑷子以及繁瑣的清洗,滅菌,包被程序(流程如圖2所示)

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圖2:共聚焦專(zhuān)用培養皿的準備樣品流程,可以直接進(jìn)行細胞培養-染色-成像操作(圖中使用的產(chǎn)品為ibidi 81156共聚焦培養皿)


操作流程:

1.在超凈臺中打開(kāi)無(wú)菌包裝的共聚焦專(zhuān)用培養皿,取出培養皿,加入細胞懸液,蓋上皿蓋,放入培養箱中靜置,等待細胞貼壁。常規細胞培養,待細胞長(cháng)置合適密度再取出,進(jìn)行免疫熒光染色。

2.吸出培養基,以PBS清洗細胞,再用2%的多聚甲醛PBS溶液固定細胞。

3.20分鐘后,吸出固定液,加入0.1%Triton X-100

4.10分鐘后,吸出Triton,清洗細胞后加入BSA封閉。

5.加入抗體熒光染色后,吸出所有試劑,加入封片劑,可以開(kāi)始共聚焦顯微成像。

使用共聚焦培養皿還有個(gè)好處:往往一個(gè)共聚焦掃描成像持續時(shí)間很長(cháng),培養皿中的液體非常容易揮發(fā),共聚焦培養皿有皿蓋,可以減少揮發(fā);如上述提到的ibidi共聚焦培養皿,有個(gè)巧妙的鎖扣設計,可以扣緊培養皿,確保在共聚焦成像的過(guò)程中,皿中的液體不會(huì )揮發(fā)(如圖3)。

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圖3:ibidi共聚焦培養皿的鎖扣設計


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